檢體注意事項
Specimen Precautions
※ 採血步驟
- 採血前核對檢驗單上姓名、病歷號碼、檢體名稱、檢驗項目、採檢管、標籤姓名。
- 依檢驗項目選擇正確的試管貼上標籤。
- 確認病人身分:核對病人姓名、檢驗單上姓名、病歷號碼與採檢試管上標籤資料。
- 向病患告知抽血檢查。
- 協助病患採舒適姿勢,露出合宜之採血部位選擇明顯具有彈性的血管不可選擇有點滴注射之手臂,同側或人工血管也不行。
- 確定扎針部位後,先以75%酒精棉球塗拭消毒,消毒皮膚時應以選定之靜脈穿刺部位為中心點,由內往外以環狀擦拭消毒,稍待乾燥後再行抽血。
※ 空針採血(或頭皮針)
- 取出空針,將針頭與空針旋緊。
- 選擇適當血管,除去針頭塑膠部分,以15°角針頭朝下在手臂上進行靜脈穿刺。
- 血液收集於空針後,用乾淨無菌棉球覆蓋於針扎傷口上再將針頭從靜脈拔除先將針頭拆卸後,再將血液緩緩注入適量的試管內。
※ 真空採血
- 取出針頭,一手握住黑色部分(抽血針頭),另一手則轉動白色部分(採檢管針頭)。
- 將採檢管針頭扭入針器(holder)中。
- 除去黑色針套,以15°角針頭朝下,在手臂上進行靜脈穿刺。
- 將試管放入針器中,並推到holder末端,穿破塞上的隔膜,血液開始流入試管。
- 當試管中的真空消失,血流便停止,此時輕輕將試管從holder移出,若要採多支試管,則重複此步驟。
- 血液收集適量於試管內後,輕輕將試管傾斜,輕微搖晃,使試管內原本充填好的添加劑與血液混和均勻,針頭從靜脈拔除前,先將最後一支試管退出holder。
※ 採檢試管建議使用順序
- 病人一次採血做多項檢查時,採檢試管使用順序原則為:無菌採檢試管→不含抗凝固劑採檢試管→含抗凝固劑採檢試管
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採檢試管建議使用順序如下:
- 血液培養瓶
- 血清、生化(紅頭)
- 血液凝固(PT/APTT)(天藍色頭)
- 急生化(綠頭)
- CBC(紫頭)
- ESR(粉紅管或黑頭)
- 生化血糖(灰頭)
※ 以早上第一次小便最佳,”隨取尿液(spot urine)” 亦可接受。一般以採取”中段尿 (midstream urine) 為準。
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採尿前
- 給予乾淨尿杯與尖底有蓋尿液收集管
- 尿液收集管送檢前核對病患標籤與檢驗單資料是否一致(包括姓名、病歷號……….)
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採尿步驟
- 尿液:取中段尿裝滿10ml有蓋尿液收集管
- 將尿液檢體與檢驗單交至檢驗科
- 取鮮檢體約花生米粒大小放入糞便收集盒送檢。
- 潛血反應檢查,應在前3天禁食肉類、動物血及含鐵質食物、鐵劑及X光顯影劑。
- 寄生虫或虫卵檢查,檢查前不宜服用藥物或抗生素。
- 如要檢查阿米巴者,採檢前不宜服用藥物,且需新鮮檢體儘速送檢。
※請病人先以開水漱口後,取早晨第一口的深咳痰為最佳檢體。
- 採檢前須禁慾3天。用手淫方式將一次量的精液,收集至無菌塑膠收集盒。
- 採檢時不可使用保險套。
- 採檢後請在檢驗單上註明採檢時間,於三十分鐘內送達檢驗室。
※ 血液氣體檢驗
- 先以 heparin 潤濕整個針筒內壁,再將空氣排掉。
- 確實找出動脈所在,穿刺抽取動脈血。
- 拔除針頭蓋上橡皮塞,貼上標籤放入冰水內,立即送至檢驗室
※ 胸水、腹水、心胞膜液收集
- 以無菌試管2支,採取標本 5-10ml,一管加入 0.3-0.8ml 1% Na-Citrate 或數滴 heparin 防止凝固,另一支試管不加抗凝劑。
※ 關節液收集
- 除第一支試管不加抗凝劑外,其餘兩支得加 heparin。
※ 基本原則
- 一般不須空腹,然亦避免飯後馬上採檢。
- 請多利用含抗凝劑之真空試管及連續採血針直接採血。若用針筒採血,採完血後,需將針頭拔掉,沿管壁徐徐將血注入;勿直沖管底,以免造成溶血。
- 使用含抗凝劑之試管採血後,須上下混合六次 (不可用力搖盪,造成溶血),並迅速送檢 (檢體放置太久,易影響細胞形態)。
- 一般血液檢驗須採紫頭管2-3 ml血液,凝固因子檢驗須採天藍管3.6 ml 血液,ESR檢驗須採黑頭管1.6 ml 血液。
- Hematocrit 低於20%或高於55%,會造成血漿與抗凝劑之比例不對,影響凝固因子分析數值。利用下列公式,可使血漿與抗凝劑達正確比例。
C = 1.85 x 0.001 (100-H) x V
H:Hematocrit (%),V:血量 (ml),C:抗凝劑量 (ml)
H:Hematocrit (%),V:血量 (ml),C:抗凝劑量 (ml)
※ 『緊急』生化檢驗採檢方法/須知:
- 除以下項目外,其他一律以淺綠頭管或紅頭管3cc送檢
- Blood Gas須冰浴送檢。
- Ammonia以紫頭管採血,須冰浴送檢。
- 冰浴送檢檢體應採血後立即送檢。
- 藥物檢驗必需用紅頭管採血(不可使用含有 gel 的採血管)
※ 『常規』生化檢驗採檢方法/須知:
- 除下列項目外,其他一律以紅頭管採血,如有Glucose應加抽灰頭管
- HbA1c以紫頭管採血。
- Glucose Tolerance Test 應依醫囑時間抽血。
- ICG 為綠頭管4cc,下午2點前送至生化組。
- 手術前之生化檢驗應於下午4點前送至生化組。
- Glucose AC, TG, HDL-C, LDL-C應空腹八小時,敬請提醒病人注意。
※ 『免疫』生化檢驗採檢方法/須知:
- 除下列項目外,其他一律以紅頭管採血
- RBC folate以紅頭管或紫頭管採血,避光,一小時內送達生化組。
- Vit B12及Serum folate以紅頭管採血,避光,一小時內送達生化組
- PTHi以紫頭管或紅頭管採血,一小時內送達生化組。
※ 『特殊』生化檢驗採檢方法/須知:
- 除下列項目外,其他一律以紅頭管採血
- 重金屬項目之 Li 須採紅頭管3cc血液,Cu、Zn須採紅頭管6cc血液或24小時尿液10cc ,Pb須採綠頭管 3cc
- G6PD須採紫頭管3cc血液,Lactate 須採灰頭管3cc血液(冰浴送檢),Pyruvate須採綠頭管 3cc血液(冰浴送檢),Chlonesterase須採紅頭管3cc血液,Iron、TIBC須採紅頭管3cc血液,δ-ALA dehydrogenase 須採綠頭管 3cc血液。
- 藥物項目之Cyclosporine 與FK-506須採紫頭管3cc血液。
- 電泳項目之Hemoglobin EP,Acid Hemoglobin EP須採紫頭管3cc血液
- 遺傳性疾病項目一律以U/A管(有蓋定量離心管_尿液收集管)送尿液2管。
※ 尿液體液檢驗採檢方法/須知:
- 請註明檢體類別:尿液 U/A管(有蓋定量離心管_尿液收集管),體液黑頭管。
- 尿液應註明24小時尿量或random尿。
- VMA,5-HIAA,17-KS,17-OHCS, δ-ALA, Porphobinogen, Catacholamine 收集尿液時請加入10cc冰醋酸或6N
※ 基本原則
- 除Screening of Cryoprotein、MAST兩項,另有規定外,其餘項目皆以無抗凝劑管(紅頭真空採血管)採血,單項需血量3 ml(真空管全滿僅為 6 ml),每增一項請多抽 1 ml。其他類別檢體量2 ml,並盛於覆蓋的黑蓋頭無菌試管中(瓶蓋鎖緊)。
※ 其他血清免疫檢驗採檢方法/須知
- Screening of Cryoprotein須抽滿紅頭真空採血管 6 ml血液及天藍頭真空採血管(含sodium citrate) 4 ml 血液各一,採檢後儘速以37℃保溫運送至血清組。
- MAST allergy test(特異性過敏原抗體檢驗)需抽滿二管紅頭真空採血管。
- 以下項目,檢體不宜冷藏且需儘速處理,請務必在常規收件日採檢,並於截止收件至少半小時前送件(星期例假日不受理)
※血清免疫檢驗單之Screening of Cryoprotein,Serum Viscosity,Cold hemagglutinin。
※特異性過敏抗體檢驗單之Eosinophil cationic protein(嗜伊紅性白血球陽離子蛋白)。
※特異性過敏抗體檢驗單之Eosinophil cationic protein(嗜伊紅性白血球陽離子蛋白)。
※ 基本原則
- 所有檢體都必需使用無菌之適當容器收集。
- 收集真正病灶處,避免受到鄰近區域常在菌得污染,例如咽喉、耳鼻檢體。
- 收集足量的檢體,例如Pus、Body Fluid等檢體,最好收集到數毫升,可用空針收集儘速送微生室
- 傷口檢體或量少檢體絕不可以直接用一般無菌棉棒送檢,需用適當的送檢;因為棉棒所能採集的檢體有限,極易乾燥,且細菌可能陷入棉棒中不易培養出來。
- 儘可能在未使用抗生素之前收集檢體,若是已使用抗生素了,應在申請單上註明。
- 檢體中不可添加任何試劑或防腐劑等物,以免干擾病原菌的分離。
- 收集檢體時不可污染到容器外面,且蓋子要鎖緊。
※ 細菌培養檢體種類及採檢方法/須知
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血液檢體:
先以肥皂將皮膚清洗乾淨,將穿刺處、血液培養瓶口、抽血者的手部三處依序用70﹪酒精,2﹪碘酊,70﹪酒精三道手續加以消毒。繫上止血帶,抽取10ml血液,於二瓶血瓶內各打入 3~5ml 血液。若有服用抗生素請使用樹脂血瓶,以避免抗生素干擾。黴菌培養、肺結核菌培養則將5mL血注入黴菌和肺結核菌專用之血液培養瓶。 -
尿液檢體:
尿液檢體通常採用潔淨排泄法;收集檢體前須先將尿道口用肥皂及清水洗淨,先排出前段尿,再用無菌盒小心接取中段尿,將蓋子旋緊送檢。若為幼兒,可用尿袋,但以收集一次小便為限,不可用儲尿。若是使用無菌導尿或恥股穿刺尿則需在申請單上特別註明。如尿液檢體無法立刻送檢,應置於4~8℃保存,但不超過4小時為限。 -
痰液檢體:
最好是收集清晨第一次痰液,從呼吸道深部咳出之痰液;咳吐痰液前請先用溫水漱口或用牙膏牙刷清潔口腔及牙齒。用無菌盒收集。收集量不可太少;收集時應儘量避免收集到口水、鼻腔 或咽喉之分泌物。若無法自取由醫護人員抽痰方式採檢。如痰液檢體無法立刻送檢,應置於4~8℃保存,但不超過6小時為限。 -
腦脊髓液檢體( C S F ):
CSF通常是取自腰椎穿刺,由醫師操作;以70%Alc或 2%碘酊消毒背部下方( 消毒手續與Blood手續相同),並需麻醉。以一特製通針管由第四與第五腰椎間穿刺入脊隨蜘蛛膜抽取。全部過程須以最嚴格的無菌技術操作。將抽出的CSF 分別置於三根無菌試管,然後將第二管迅速送至微生物室,或 37℃溫箱,不可放置冰箱。 -
糞便檢體 (Stool) 直腸拭子檢體:
糞便排出後,沾取花生大小且含黏液、血液、或膿之糞便,直接裝入緩衝保存平內送檢。直腸拭子採集時,須用肥皂、70% Alc 和水將肛門周為洗淨,然後用一根浸過無菌生理食鹽水或液體攜送培養基的拭子,插入肛門約6㎝ 處輕輕旋轉,以便使之與直腸黏膜表層接觸,取出後置Transtube (藍頭)立刻送檢。 -
Pus (Wound):
採取前先用70%酒精或2%碘酊消毒周圍皮膚;若傷口很髒,可用無菌不含任何抗生素的Normal Saline沖洗傷口再取檢體。若是皮膚或黏膜下之膿瘍,儘可能以針筒抽取檢體,若無法抽則可酌以無菌刀片切開,並以無菌棉棒壓擠,取其膿血送檢。深部檢體應同時送厭氧和需氧菌培養,以抽取方式採檢,打入無菌試管或直接針頭內送檢,若無法抽取才以棉棒送檢;若以棉棒送檢者,由於檢體量少應送2支,至少要有1支以厭氧棉籤(Anaerobic Transtube)送檢。 -
體液:
採檢前先以70%酒精或2%碘酊消毒皮膚,再用針筒抽取後,置入無菌黑頭試管送檢,應置於35℃溫箱保存,勿置於冰箱。 -
生殖道:
若懷疑年幼女童有淋病性女陰陰道炎時,檢體由陰道外圍部份取得。男性懷疑有急性淋病時,檢體可由醫師採自尿道口分泌物、前列腺或精囊後,立即送檢。 -
CVP & 其他 Tip Culture:
CVP Tip 需以無菌方式,取血管內5公分長Tip置入無菌黑頭試管送檢。其他Tip 需註明來源,Foley Tip 不做培養。 -
Tissue & Biopsy Culture:
以無菌黑頭試管或無菌盒送檢,內不可置入福馬林等固定液,因為微生物會被其殺死無法培養。 - TB-PCR:
- 血液檢體:以紫蓋頭採血試管(K3EDTA)採檢。
- 組織檢體:請放入黑頭無菌試管,並保持檢體濕潤。
- CSF檢體:CSF必須大於1mL。
- 痰液檢體:請放入無菌盒中。
- 體液檢體:請放入黑頭無菌試管 (不可加 Heparin)。
- 尿液檢體:請放入無菌盒或黑頭無菌試管。
- Legionella antigen (urine):
- 體收集與尿液的採檢相同,此項目只做尿液檢體其它不適合。
- 請用正確檢體採集容器。
- 檢體採集後,應儘快送達檢驗室,因為血液檢體在試管中仍然會繼續進行代謝作用,影響某些檢測值的準確性;細菌培養會死亡而非必要細菌會增殖。
- 血液檢體、常規尿液檢體採檢後,如檢測樣品為血清(漿)檢體,最好能於一小時內送達檢驗室。
- 若確實無法如時送達檢驗室,尿液檢體4℃冰箱保存,可保存6~8小時。
- 體液常規檢查,應在採檢後一小時內送到檢驗室。
- 急診生化請用綠頭管(heparine)試管;Ammonia、Blood gas、Lactate、Carboxyhemoglobin(HbCO一氧化碳血紅素,整管血抽滿), 應於採檢後立刻放入4℃冰浴保存,應立即送檢
- 檢體溶血:易造成假值偏高或偏低。
- 檢體Clot:無法進行檢驗作業須重採檢體。
- 檢體量不符:一般試管檢體量太少、試管有抗凝固劑其檢體量太少或太多(比例不對)。
- 缺檢體。
- 檢體未貼姓名標籤。
- 檢體運送、保存方式不符。
- 檢驗單與檢體種類不符合:檢體不對。
- 採檢者未簽名。
- 檢驗單與檢體姓名不符合:無法辨識病患身份。
- 採檢容器破裂或未關緊以致檢體流失。
- 檢體採取不當。 如urine routine檢查應取中段尿病患卻採前段尿,時間點不對亦退件。
- 採檢容器不符(檢體不符)。
Note:
常見之退檢原因以檢體溶血、clot、未貼標籤、檢體量不足、容器不符居多;其中溶血會使鉀、鎂、磷、LDH、AST、Aldolase、鈣、酸性磷酸酶之測定值上升,若檢體呈現中度或大量溶血,應再次採血。檢體Clot會影響檢測結果如:CBC、PT、APTT、ESR、GAS等,採檢常見的問題。※ 常見異常採血情形
- 點滴附近血管採血
- 錯誤的採血管順序或不同試管中血液混合
- 錯誤採血時間ex:藥物濃度or賀爾蒙
※ 常見採血問題-為何要冰浴送檢?
-
針對室溫不穩定的檢查項目通常都會有特殊規定。
ex:降低保存溫度、加溫保存、加保存劑、加酸、特殊試管------等等。 -
冰浴送檢項目大多是以降溫的方式來降低代謝率。
ex:NH3,Blood Gas,但降低並非阻止所以仍然建議要儘快送檢。
※ 常見採血問題-為何會溶血?
- 針頭太細:血液在太小的空間進出容易擠壓破裂(請儘量使用22號或以下針頭) 。
- 酒精未乾:殘存在皮膚上的酒精藉由針頭與血液接觸導致溶血。
- 血抽太久:止血帶綁太久(>2分鐘)也是會造成血液過大壓力。
- 血抽太快或推太快:不要太用力拉和推空針。
- 血抽太少:血量太少,讓試管有太多的空間,在運送過程中血球增加撞擊機會。
- shake檢體:含抗凝劑檢體應mix不要shake,血球大力撞擊易破損。
- 溫度差異過大:檢體在溫度差異大得環境下進出容易導致細胞膜破裂。
- 擠壓的方式讓血液流入試管:血球無法承受過大的壓力,直接讓血直接滴到試管中,
- 易造成溶血外,也會讓組織 液流入檢體容易clot。
※ 常見採血問題-為何會Clot?
- Clot可分內因和外因性原因:
- 內因:病人有特殊抗體導致,EDTA誘導血小板凝集(改用藍頭試管送檢需抽滿,但也僅限於血小板的DATA其餘CBC項 目仍用紫頭)。
- 外因:抽血時間過長:血液離開體外會漸漸凝集後凝固;若抽太久而檢體未與抗凝劑混合就會導致Clot。
- MIX不均勻:檢體未與抗凝劑充分混合導致。
※ 常見採血問題-為何兩次結果差很多?
- 兩次data有差異可分為:
- 同一支做兩次:可能原因如下:機台有問題、檢體量吸不夠、mix不均勻… 等。
- 短時間內抽兩次檢體:
- 檢驗室通知重抽:如檢體溶血或clot。
- 醫師懷疑data不對,可能發生原因是抽錯病人、貼錯標籤、檢體部位不同( ex:靜脈和動脈)、clot挑掉、檢驗室編錯號或收錯件。
※ 常見採血問題-為什麼灰頭有時可以不抽有時候又一定要抽?
- 血糖檢查,血清和血漿都可以,但灰頭試管中有加NAF(葡萄糖保存劑),所以測定GLU要抽灰頭,若使用其他試管未立刻送檢立刻操作,血糖值會下降;因此,無法先離心的檢體就需多抽灰頭,ex:員工體檢、社區體檢…等。
※ 採血注意事項-正確部位選擇
- 第一選擇-前臂中靜脈:位於肘窩的表淺靜脈粗大、好固定、疼痛最輕微、最不可能造成血球溶血。
- 第二選擇-頭靜脈:位於肘上臂,為腋靜脈分枝此部位不易固定
- 第三選擇-貴要靜脈(肘皮靜脈):位於肘前臂,為肱靜脈分枝。
- 第四選擇-手背靜脈:不易固定
雖然粗大而且容易觸按,但靠近上膊動脈與中神經,所以很可能不慎穿刺到動脈或神經;因此,只有在前臂中靜脈與頭靜脈不適合時才考慮。
※ 採血注意事項-錯誤採血部位
- 切除乳房該側手臂
- 水腫部位
- 血腫
- 有疤痕部位
- 手臂上有導管、廔管或血管移植
- 施打任何種類 IV的部位
※ 採血注意事項-步驟說明
- 先備管:取正確之採檢容器並貼上病患姓名標籤。
- 綁上橡皮帶,請病患輕握,勿超過2分鐘。
- 用酒精棉片或酒精棉球由內往外擦拭抽血處。
- 依檢驗項目決定採血順序及檢血量。
- 抽完血後,立即將血液注入已貼上該病患姓名標籤的抽血管內,以減少錯誤的發生。
- 沿管壁徐徐注入血液,不可擠壓,以免造成溶血。
- 注入加有抗凝劑的採血管後,要立即上下顛倒6-8次,使其充分混合,以免凝固。